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实验二精子的活率和密度测定
一、目的和要求 掌握检查精子密度、评定活率的方法;熟悉肉眼检查精液品质的方法;验证观察理化因素对精子运动及生存能力的影响。 由于目测法不够准确,所以采用精子计数的方法,测定1ml精液内的精子数。不过要有一定经验才会准确。要求同学们一定要熟练掌握此法,它是目前许多简单而实用方法的基础。 二、材料和仪器 1.精液:牛、猪或兔等任一种动物的精液。 2.药品器械:显微镜、显微镜保温箱(或显微镜恒温台)、载玻片、盖玻片、搪瓷盘、温度计、滴管、擦镜纸、纱布、试管、75%酒精、5%伊红、1%苯胺黑、血细胞计数板、计数器、95%酒精、乙醚、0.9%和3%NaCl、保温瓶、药棉等。 三、内容和方法 (一)精子密度的检查(显微镜观测法)及活率评分 1.检查精子的密度:取一小滴精液于洁净的载玻上,盖上洁净的盖玻片,使精液分散成均匀的一薄层,不得有气泡存留,也不能使精液外流或溢出于盖玻片上。置于显微镜下放大100倍观察,按下列等级评定其密度。 密——在整个视野中精子的密度很大,彼此之间空隙很小,看不清各个精子个体运动的情况。每毫升精液含精子数约在10亿个以上。登记时以“密”字。 中——精子之间空隙明显,精子彼此之间的距离约有一个精子的长度,有些精子的活动情况清楚可见。这种精液的密度评为“中”,每毫升所含精子数约2~10亿个之间。登记时以“中”字。 稀——视野中精子稀疏、分散,精子之间的空隙超过一个精子的长度。这种精液每毫升所含精子数在2亿以下。登记时以“稀”字。 2.评定精子的活率:必须于采精后立刻在25℃左右的实验室内进行,最好在37℃保温箱内或加热的载物台上进行。在评定精子活率的同时也可以测定精子的密度。 用玻璃棒蘸取一滴原精液或经稀释的精液(马、猪精液的精子密度低,不须稀释;而牛、羊精液的密度大,须用0.9%氯化钠溶液稀释,其温度须与精液密度相近),滴在洁净的载玻片上,盖上洁净的盖玻片,其间充满精液,不存留气泡。也可滴在盖玻片上翻放于凹玻片的凹窝上。置于显微镜下,放大250~400倍检查。注意显微镜的载物台须放平,最好是在暗视野中观察。 精子活动有三种类型:直线前进运动、旋转运动和原地摆动。评价精子活率是根据直线前进运动精子数的多少而定。 精子活率= 分子也可用“总精子数-非直线前进运动精子数表示。 目前评定精子活率等级的方法有两种: 十级制——在显微镜视野中估算直线前进运动精子所占全部精子的百分数。直线前进运动的精子为100%者评为1.0级;90%者为0.9级。以此类推。 五级制——全部精子都呈直线前进运动,属于“5”级;绝大多数呈直线前进运动(约80%)为“4”级;前进运动精子略多于半数者(约60%)为“3”级;不及半数者为“2”级;呈直线前进运动的精子数目极少者属“1”级。 精子活率是精液品质评定的重要指标。受精能力与直线前进运动精子数的多少密切相关。一般活率在50~80%之间时,输精后受精力差别不大;而低于50%者,对于受精力影响较大。 (二)精子密度的计数检查 1.器材介绍: (1)介绍血细胞计数室的构造。 (2)介绍血球吸管的构造及各种家畜应该使用何种血球吸管(红血球吸管或白血球吸管)。由于同学们在学习生理时已熟悉有关血细胞计数板的运用,故不再详述它的结构。 牛、羊、鸡的精液(密度高)用红血球吸管:若将精液吸至“0.5”刻度处,然后再吸3% NaCl至“101”刻度,为稀释200倍。如将精液吸至“1.0”刻度处,再吸3%NaCl至“101”刻度,则为稀释100倍。 猪、马、兔的精液(密度低)用白血球吸管:若将精液吸至“0.5”刻度处,然后再吸3%NaCl至“11”刻度,为稀释20倍。如将精液吸至“1.0”刻度处,再吸3%NaCl至“11”刻度,则为稀释10倍。 2.方法和步骤 (1)将计数室推上盖玻片。要求盖玻片被推上后以立起计数板不掉下来为原则,并且盖玻片在折光时可见到清晰的彩色条纹。 (2)将盖好盖玻片的计数板置于低倍镜下观察,首先要求找到清晰的计数室。 (3)用血球吸管吸精液,用药棉擦去吸管尖端外围附着的精液,并用3%NaCl稀释,因不同的家畜用不同的吸管稀释。 (4)吸管吸好精液和3%NaCl以后,用拇指及食指堵住吸管两端进行来回的充分摇动,混匀。然后弃去吸管中的前两滴,再将吸管尖端置于血球计数室和盖玻片交界处的边缘上,吸管内的精液自动渗入计数室内,使之自然、均匀地分充满计数室。注意不要使精液溢出盖玻片,也不可因精液不足而使计数室内有气泡或干燥处,否则,应重新操作。静放2分钟,开始计数。 (5)镜检和计数:移到高倍镜下检查。 首先数出四角和正中间的五个方格中的精子数,也就是80个小方格中的精子数。载物台要平置,不能斜放。光线不必过强。 计算精子数:5个方格中共数的精子数×5=整个计数室中25个中方格内的精子总数。也就是1m2×1/10mm=1/10mm3的精子。如果再×10,就=1mm3精液内的精子数。再×1000=1ml精液内的精子数(因为1cm3为1ml)。再×稀释倍数。如果取来的精液本身不是原精液,而是经稀释“X”倍,那么还须再דX”倍。将以上的结果总括起来说: 1ml原精液内的精子数=5个中方格数的精子数×5×10×1000×稀释倍数× X(如果是原精液不要דX”)。 注:(1)一般羊的精子密度大约为20~30亿/ml; 一般牛的精子密度为10~15亿/ml; 一般猪、马的精子密度为1~1.5亿/ml; 一般兔的精子密度为2~3亿/ml; 一般鸡的精子密度为35~38亿/ml。 (2)吸管用后清洗步骤: 自来水→蒸馏水→95%酒精→乙醚。 (3)计数板用后清洗方法: 自来水→蒸馏水→白稠布擦干净备用。 (4)也可用移液器稀释。 用移液器吸10μl精液+1990μl(在小试管内先加2ml,再吸出10μl)的3%NaCl,即稀释200倍。同样,20μl精液用1980μl的3%NaCl稀释,即稀释100倍。以此类推。 还有其它方法,如在10ml离心管中,加0.5ml精液,再用NaCl稀释至10ml,即稀释20倍。 (5)也可用2%伊红溶液稀释精子,既杀死精子又使精子头部着色,使计数容易。 (三)注意事项: 1.若精子压计数室的线,则以精子头为准,按照快速连接“数上不数下,数左不数右”的原则计数。 2.为了减少误差,应对同一样品做2~3次重复,求其平均值。如果计数的结果相差较大,则应进行再次检查。 四、作业 写出实验过程及其精子活率、密度测定结果。
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